實驗室經(jīng)驗之總結(jié)（四十五）：細(xì)胞培養(yǎng)常見問題解決！

1、如何儲存和解凍血清才不會使產(chǎn)品質(zhì)量受損? 

建議血清應(yīng)保存在-2O℃。若一次無法用完一瓶，無菌分裝血清至恰當(dāng)?shù)臏缇萜鲀?nèi)，再放回冷凍。將血清從冷凍箱取出后，置于2～8℃冰箱使之緩慢融解，一般是融解過夜。

 2、血清中包含絮狀沉淀，它們是什么，怎么處理? 

沉淀主要成分是纖維蛋白和脂蛋白，不會影響血清品質(zhì)。 首先讓其沉淀在瓶子底部，中上層無沉淀血清直接轉(zhuǎn)出使用，下層血清裝到50ml無菌離心管，400g，離心3分鐘即可除去 (一般不建議采用過濾的方法除去沉 淀，因為沉淀會堵塞濾膜而無法過濾)。

3、實驗室如何選擇適合的血清? 

稀有的澳洲血清培養(yǎng)嬌貴細(xì)胞(小鼠ES、原代細(xì)胞分離培養(yǎng))，南美血清或國產(chǎn)胎牛血清用于癌細(xì)胞、常規(guī)細(xì)胞系培養(yǎng)(用量大)，新生牛血清用于病毒包裝(構(gòu)建穩(wěn)轉(zhuǎn)細(xì)胞株)。

4、微生物培養(yǎng)基中添加了血清和抗生素后，可長期保存嗎? 

一旦您在新鮮培養(yǎng)基中添加了血清和抗生素時，您應(yīng)該在兩周內(nèi)使用它。因為一些抗生素和血清中的基本成分在解凍后就開始降解。

 5、有必要做熱滅活嗎?

實驗顯示，經(jīng)過正確處理的熱滅活血清，對大多數(shù)的細(xì)胞而言是不需要的。經(jīng)此處理過的血清對細(xì)胞的生長只有微小的促進(jìn)，或*沒有任何作用，甚至通常因為高溫處理影響了血清的質(zhì)量，而造成細(xì)胞生長速率的降低。而經(jīng)過熱處理的血清，沉淀物的形成會顯著的增多，這些沉淀物在倒置顯微鏡下觀察，像是“小黑點”，常常會讓研究者誤以為是血清遭受污染，而把血清放在37℃環(huán)境中，又會使此沉淀物更增多，使研究者誤認(rèn)為是微生物的分裂擴(kuò)增。 若非必須，可以不需要做熱處理這一步。不但節(jié)省時間，更確保血清的質(zhì)量!

6、細(xì)胞培養(yǎng)中出現(xiàn)黑點是污染嗎?如何處理? 

一旦您在細(xì)胞培養(yǎng)的過程中發(fā)現(xiàn)有黑點生成，首先，要肉眼觀察微生物培養(yǎng)基是否混濁，然后，在鏡下觀察培養(yǎng)細(xì)胞生長的狀態(tài)，黑點是否游動。如果細(xì)胞被污染，微生物則會大量繁殖，微生物培養(yǎng)基就會迅速變黃、變混濁。污染包括細(xì)菌污染、支原體污染等。 如果在鏡下觀察細(xì)胞，生長狀態(tài)良好，與黑點出現(xiàn)前相比，沒有任何變化，那么，黑點的出現(xiàn)可能與以下幾種情況有關(guān)

(1)細(xì)胞生長過老，破碎的細(xì)胞殘骸;

(2)血清質(zhì)量不好，反復(fù)凍融的結(jié)果;

(3)配制培養(yǎng)基的pH值偏高，不宜細(xì)胞生長;

(4)培養(yǎng)原代細(xì)胞中出現(xiàn)小黑點，可能是原代組織中的雜質(zhì)，多次傳代可以消除。

 7、EDTA在細(xì)胞消化過程中起什么作用?

EDTA是一種螯合劑，它可以螯合Ca2+ 或Mg2+，而細(xì)胞表面很多和培養(yǎng)皿或培養(yǎng)瓶結(jié)合的蛋白都是帶有Ca2+ 或Mg2+的，把這些離子螯合后，可以加速細(xì)胞和培養(yǎng)皿的脫離，促進(jìn)消化。上皮類細(xì)胞的連接存在“橋粒”結(jié)構(gòu)，是細(xì)胞間“牢固”的連接，但橋粒的形成依賴于鈣離子的存在。在胰酶消化細(xì)胞時，加入EDTA，可以破壞細(xì)胞的橋粒結(jié)構(gòu)，使細(xì)胞能夠分散成單個細(xì)胞。通俗地說，就是破壞細(xì)胞間的粘連。

8、如何選用特殊細(xì)胞系培養(yǎng)基?

培養(yǎng)某一類型細(xì)胞沒有固定的培養(yǎng)條件。選DMEM做貼壁細(xì)胞培養(yǎng)、RPMI-1640做懸浮細(xì)胞培養(yǎng)。另外還可以參考ATCC的推薦信息。

9、 怎樣讓細(xì)胞適應(yīng)新的條件?

從原條件逐漸過度：1/4、1/2、3/4，后是*新培養(yǎng)基。

10、為何微生物培養(yǎng)基保存于4℃，顏色會偏暗紅色?

（1）.培養(yǎng)基內(nèi)之CO2會逐漸溢出，造成微生物培養(yǎng)基越來越偏堿性。顏色也會隨堿性增加而更偏暗紅。

（2）.培養(yǎng)基偏堿之結(jié)果，將造成細(xì)胞生長停滯或死亡。需調(diào)整pH值至7.0~7.2. 11、細(xì)胞凍存管應(yīng)如何解凍? 37℃，1~2分鐘內(nèi)全部融解。 冷凍管建議放在液氮液面上面，由液氮桶中取出解凍時，必須注意安全(戴護(hù)目鏡)，預(yù)防冷凍管之爆裂。

11、細(xì)胞凍存管應(yīng)如何解凍? 可能原因：

(1)胰蛋白酶消化過度

(2)支原體污染

(3)消化液或培養(yǎng)液配制錯誤、過期儲存、儲存不當(dāng)

(4)細(xì)胞老化(如傳代前細(xì)胞已匯合導(dǎo)致失去貼附性)

(5)接種細(xì)胞起始濃度太低或太高 解決辦法： 1． 準(zhǔn)備一個培養(yǎng)容器，內(nèi)裝合適體積的適宜培養(yǎng)基，并使其溫度和pH與建議的相稱 。 2． 在37℃或該細(xì)胞系正常生長溫度水浴下通過輕柔搖動迅速溶解凍存管（約2分鐘）； 3． 管中內(nèi)容物溶解后立刻將凍存管移到超凈工作臺內(nèi)，并用70%酒精消毒表面防止污染，注意無菌操作。 4． 擰開凍存管蓋，將管中內(nèi)容物轉(zhuǎn)移到已裝有少量培養(yǎng)液的無菌離心管中稀釋，離心（一般125g，10分鐘），棄去上清并用1~2ml*培養(yǎng)基重新懸浮沉淀細(xì)胞，然后轉(zhuǎn)移細(xì)胞懸浮液到培養(yǎng)容器內(nèi)混合均勻。注意：如果凍存液中含5% DMSO，則不必離心，只需用15ml培養(yǎng)液懸浮即可。因為DMSO在這個濃度時沒有毒性。 5．24小時后檢查培養(yǎng)情況，如果需要的話進(jìn)行擴(kuò)傳。有些細(xì)胞系（比如雜交瘤細(xì)胞）從凍存狀態(tài)恢復(fù)需要幾天時間。 實際上，一些雜交瘤細(xì)胞在天培養(yǎng)液中出現(xiàn)死亡細(xì)胞并產(chǎn)生許多細(xì)胞殘骸。許多細(xì)胞凍存后活力下降并在融化后24小時到一個低狀態(tài)。此后細(xì)胞將恢復(fù)并進(jìn)入對數(shù)生長期。細(xì)胞復(fù)蘇過程不是很難，主要是速溶這步很關(guān)鍵。再有，細(xì)胞復(fù)蘇的狀態(tài)如何，較大程度上取決于細(xì)胞凍存時的操作。還有一點，細(xì)胞也是有思想的，你對他好，關(guān)心他照顧他，他也不會讓你失望的。

DC2.4小鼠樹突狀細(xì)胞    B-CPAP細(xì)胞培養(yǎng)說明書